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辉大基因开发出新型RNA碱基编辑器ceRBE,紧凑高效展现体内治疗巨大潜力
基因编辑技术的发展使分子生物学领域发生了革命性的变化,并为治疗遗传疾病开辟了新的可能性。其中一种技术是RNA碱基编辑,它可以在不改变DNA序列的情况下对RNA序列进行精确修饰,避免了DNA编辑脱靶引起的基因组的永久性改变。其中,由催化失活的 CRISPR-Cas13(dCas13)蛋白和RNA脱氨酶(ADAR或突变体)组合的编辑器,在体外细胞的多个位点中都表现出很好的腺嘌呤到肌苷(A-to-I)或胞苷到尿苷(C-to-U)的编辑效率1-3。然而,基于dCas13的RNA碱基编辑器尺寸较大,难以包装到单个腺相关病毒(AAVs)中进行有效的体内递送,限制了其在体内治疗中的应用。因此,需要一种在体内具有更高编辑效率的更小的RNA碱基编辑器。
2023年4月25日,辉大(上海)生物科技有限公司(简称,辉大基因)研发团队在《Advanced Science》期刊发表了题为“Develop a compact RNA base editor by fusing ADAR with engineered EcCas6e”的研究论文。该研究利用由199个氨基酸构成的EcCas6e蛋白取代了体积较大的dCas13蛋白,通过与ADAR脱氨酶融合,开发了一种紧凑高效的RNA碱基编辑器(ceRBE)。研究人员在HEK293T细胞中发现,跟已有的dCas13蛋白介导的RNA碱基编辑器(RESCUE-S2)相比,ceRBE在内源位点中实现了更高效的A-to-I和C-to-U的碱基编辑,并表现出更低的转录组水平脱靶。通过包装成AAV并递送到Duchenne肌营养不良(DMD)的人源化小鼠模型中,ceRBE编辑器成功修复了DMD Q1392X突变(编辑效率68.3±10.1%),并高效地恢复了基因产物蛋白的表达。该研究不仅开发了一种紧凑高效的RNA碱基编辑器,且对于RNA碱基编辑技术应用到疾病治疗领域中提供了更多的支持。
为了开发小体积的RNA碱基编辑器,研究人员选择了10种属于1类CRISPR-Cas系统并参与了crRNA前体加工过程的小体积的Cas蛋白。通过与ADAR脱氨酶融合表达,在HEK293T细胞中进行了效率探究。其中由199个氨基酸构成的EcCas6e蛋白介导的编辑器,表现出最好的编辑效率和最少的转录组水平脱靶。随后,研究人员从蛋白、crRNA结构、亚细胞定位和间隔区长度等方面,对EcCas6e蛋白介导的编辑器进行了改造,并最终得到了一种小体积、高活性且更安全的RNA碱基编辑器(ceRBE)。在HEK293T内源位点中,相比现有的dCas13介导的RNA碱基编辑器(RESCUE-S),含有相同脱氨酶的ceRBE编辑器表现出更高的编辑效率和更好的安全性。值得注意的是,ceRBE在之前报道的RESCUE-S无法编辑的SMN1、NF1、NF2和RAF1位点2也实现了非常高效的编辑(图一)。
图一. 紧凑高效的RNA碱基编辑器(ceRBE)的筛选、优化和验证
为了进一步探究ceRBE的在体治疗潜力,研究人员构建了人源化DMDQ1392X模型小鼠,并利用AAV将ceRBE碱基编辑器递送到了8周龄疾病小鼠的的右胫骨前肌(TA)中。注射后3周,采集TA组织并分析碱基编辑效率、免疫印迹和肌营养不良蛋白表达的免疫荧光。结果显示,A-to-I的编辑效率达到68.3±10.1%,肌营养不良蛋白的表达也基本恢复(免疫印迹:49.3±2.4%;组织学染色:68.1±9.4%)。RNA测序脱靶分析结果也证明了ceRBE的在体安全性。总之,系列结果证明了ceRBE在体内有效编辑RNA的潜力并为推进RNA碱基编辑技术在遗传疾病治疗中的应用提供了支持(图二)。
图二. ceRBE在人源化DMDQ1392X模型小鼠中的治疗效果
辉大基因王兴博士、李国玲博士为本研究论文的共同第一作者,杨栋博士作为共同第一作者之一,目前已入职辉大基因。辉大基因樊占青作为参与者作出了重要贡献。辉大基因创新研究院院长周英思博士、辉大基因创始人&首席科学顾问杨辉研究员为该论文通讯作者。
原文链接:
https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/advs.202206813
参考文献:
1. Cox, D.B.T. et al. RNA editing with CRISPR-Cas13. Science 358, 1019-1027 (2017).
2. Abudayyeh, O.O. et al. A cytosine deaminase for programmable single-base RNA editing. Science 365, 382-386 (2019).
3. Xu, C. et al. Programmable RNA editing with compact CRISPR-Cas13 systems from uncultivated microbes. Nat Methods 18, 499-506 (2021).